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大鼠腦立體定位儀

  • 更新時間:2025-11-03
  • 訪  問  量:3886

簡要描述:腦立體定位儀是神經(jīng)解剖、神經(jīng)生理、神經(jīng)藥理和神經(jīng)外科等領(lǐng)域內(nèi)的重要研究設(shè)備,腦立體定位儀用于對神經(jīng)結(jié)構(gòu)進(jìn)行定向的注射、刺激、破壞、引導(dǎo)電極等操作,可用于帕金森氏病動物模型建立,癲癇動物模型建立,腦內(nèi)腫瘤模型建立,學(xué)習(xí)記憶,腦內(nèi)神經(jīng)干細(xì)胞移植,腦缺血等研究

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產(chǎn)品詳情
品牌玉研儀器價格區(qū)間面議
產(chǎn)地類別國產(chǎn)應(yīng)用領(lǐng)域綜合

玉研儀器自主研發(fā)腦立體定位儀十四年,適用于大鼠、小鼠等實驗動物,經(jīng)典十字操作臂實現(xiàn)精準(zhǔn)定位,精度可達(dá)10微米,特制螺紋精密螺桿,穩(wěn)固不晃動實現(xiàn)對特定腦區(qū)的精確定位,是神經(jīng)環(huán)路研究、神經(jīng)系統(tǒng)性疾病、神經(jīng)藥理等領(lǐng)域內(nèi)的重要研究設(shè)備,廣泛面向全國各大科研院校,醫(yī)院,高新企業(yè),藥企,醫(yī)療機(jī)構(gòu)等科研單位。


腦立體定位儀是神經(jīng)解剖、神經(jīng)生理、神經(jīng)藥理和神經(jīng)外科等領(lǐng)域內(nèi)的重要研究設(shè)備,腦立體定位儀用于對神經(jīng)結(jié)構(gòu)進(jìn)行定向的注射、刺激、破壞、引導(dǎo)電極等操作,可用于帕金森氏病動物模型建立,癲癇動物模型建立,腦內(nèi)腫瘤模型建立,學(xué)習(xí)記憶,腦內(nèi)神經(jīng)干細(xì)胞移植,腦缺血等研究。


 

腦立體定位儀是利用大小鼠顱骨外面的前囟點,即Bragma點,或其它參考點所規(guī)定的三維坐標(biāo)系統(tǒng),來確定皮層下某些神經(jīng)結(jié)構(gòu)的位置,通過固定在立體定位儀操作臂上的在特定三維坐標(biāo)的神經(jīng)結(jié)構(gòu)的位置,鉆孔打開顱骨,以便在非直視暴露下對其進(jìn)行定向的刺激、破壞、注射藥物、引導(dǎo)電位等研究。
 


 

數(shù)字型號的腦立體定位儀,能直觀的顯示出定位儀的三維坐標(biāo),并可以按鍵歸零,移動操作臂后,顯示特定位置的新的坐標(biāo),通過選配不同動物適配器可用于不同的小動物實驗。
 


產(chǎn)品特點:

· 操作靈活、簡便,標(biāo)配大鼠適配器;

· 腦立體定位儀標(biāo)尺是由激光雕刻,清晰易讀,精確度為0.1mm;

· 腦立體定位儀操作臂移動范圍(上下,左右,前后):三方向移動距離80mm;

· 垂直方向可90度轉(zhuǎn)動,并隨時鎖定位置;

· 擴(kuò)充能力很強(qiáng),可增加操作臂,增加注射裝置及等;

· 可以根據(jù)需要增加不同的固定器,用于多種動物;


具有以下優(yōu)勢:  

· 標(biāo)尺易讀數(shù)

· 移動平滑

· 調(diào)節(jié)

· 電生理操作方便

· 配件多樣,可選配各種動物適配器,麻醉罩以及


 

標(biāo)準(zhǔn)型大鼠定位儀的主要構(gòu)造:


 

大鼠腦立體定位儀  



根據(jù)需求不同,有多種不同的型號可供選擇:單臂型,雙臂型,數(shù)顯型,數(shù)控型,敬請。



多種型號可供選擇:
 


 

大鼠腦立體定位儀  

標(biāo)準(zhǔn)型大鼠腦定位儀  型號:SA-100


 

大鼠腦立體定位儀  

數(shù)顯大鼠腦定位儀  型號:SA-150


大鼠腦立體定位儀  

數(shù)顯雙臂大鼠腦定位儀  型號:SA-151


 


 


相關(guān)配件及可選配件:  



大鼠腦立體定位儀  

大鼠腦立體定位儀  

大鼠門牙固定適配器

小鼠固定適配器


大鼠腦立體定位儀  



大鼠腦立體定位儀  

電極夾持器

電極、螺帽、注射器夾持器


大鼠腦立體定位儀  

大鼠腦立體定位儀  


電極、注射器夾持器


微量注射器


大鼠腦立體定位儀  


大鼠腦立體定位儀  






部分參考文獻(xiàn):
1. Albéri, L., Lintas, A., Kretz, R., Schwaller, B., & Villa, A. E. (2013). The calcium-binding protein parvalbumin modulates the firing 1 properties of the reticular thalamic nucleus bursting neurons. Journal of neurophysiology, 109(11), 2827-2841.
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3. Ali, I., O’Brien, P., Kumar, G., Zheng, T., Jones, N. C., Pinault, D., O’Brien, T. J. (2013). Enduring Effects of Early Life Stress on Firing Patterns of Hippocampal and Thalamocortical Neurons in Rats: Implications for Limbic Epilepsy. PLOS ONE, 8(6), e66962.
4. Bell, L. A., Bell, K. A., & McQuiston, A. R. (2013). Synaptic Muscarinic Response Types in Hippocampal CA1 Interneurons Depend on Different Levels of Presynaptic Activity and Different Muscarinic Receptor Subtypes. Neuropharmacology.
5. Bolzoni, F., B?czyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.
6. Bolzoni, F., B?czyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.
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9. Feng, L., Sametsky, E. A., Gusev, A. G., & Uteshev, V. V. (2012). Responsiveness to nicotine of neurons of the caudal nucleus of the solitary tract correlates with the neuronal projection target. Journal of Neurophysiology, 108(7), 1884-1894.
10. Clarner, T., Diederichs, F., Berger, K., Denecke, B., Gan, L., Van der Valk, P., Kipp, M. (2012). Myelin debris regulates inflammatory responses in an experimental demyelination animal model and multiple sclerosis lesions. Glia, 60(10), 1468-1480.
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14. Yu, L., Metzger, S., Clemens, L. E., Ehrismann, J., Ott, T., Gu, X., Nguyen, H. P. (2010). A28 Accumulation and aggregation of human mutant huntingtin and neuron atrophy in BAC-HD transgenic rat. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.
15. Baxa, M., Juhas, S., Pavlok, A., Vodicka, P., Juhasova, J., Hru?ka-Plocháň, M., Motlik, J. (2010). A26 Transgenic miniature pig as an animal model for Huntington’s disease. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A8-A9.
 






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